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干货分享丨详解单细胞核 RNA 测序(snRNA-seq)应用与进展
发布时间:2020-08-19 浏览次数:11712
单细胞RNA测序(scRNA-seq)技术的飞速发展使人们对组织中细胞种类、细胞的特殊状态有了深入认识。但是,scRNA-seq对于器官或者固体组织制备的细胞悬液的细胞活性和细胞数目有着较高的要求,这也意味着 “躺在”超低温冰箱中的大量珍贵临床样本(脑组织,肿瘤组织等)都无法进行scRNA测序。而单细胞核RNA测序技术(snRNA-seq)的出现,则在很大程度上解决了以上问题。

单细胞 RNA 测序(scRNA-seq)技术的飞速发展使人们对组织中细胞种类、细胞的特殊状态有了深入认识。 但是,scRNA-seq 对于器官或者固体组织制备的细胞悬液的细胞活性和细胞数目有着较高的要求,这也意味着“躺在”超低温冰箱中的大量珍贵临床样本(脑组织,肿瘤组织等)都无法进行 scRNA 测序。 而单细胞核 RNA 测序技术(snRNA-seq)的出现,则在很大程度上解决了以上问题。

虽然细胞核内的遗传物质可以大体代表整个细胞,然而,细胞质和细胞核之间的 RNA 类型和比例却存在一定的差异。RNA 首先在细胞核内转录,并在细胞核内积累到稳定状态。在细胞质中,mRNA 根据其出核率和不同的命运,包括转运到特定的亚细胞位置、核糖体的翻译、小 RNA 的降解等,达到不同的稳态水平。研究人员发现,细胞核 RNA 中含有大量的非编码序列,其中包含 41% 的基因间区序列和 25% 的内含子序列。同时,研究人员也发现有 41.7% 的转录本序列只在细胞核中存在。多项研究表明,将内含子区域的 reads 增加了 snRNA-seq 的敏感性,并提高识别细胞类型的分辨率。因此,在处理单细胞核 RNA 测序数据时,纳入内含子序列具有重要意义。下面,就让我们详细了解一下针对不同组织样本进行 snRNA-seq 的部分案例与要点。

脑组织样本的 snRNA-seq

对于脑组织来说,scRNA-seq 并不能全面地分析神经细胞的类型。一些细胞类型更容易受到组织解离过程的影响,比如在成人的新大脑皮层中,非神经元细胞在解离中比神经元耐受性更好,在单细胞悬浮液中大量存在;在小鼠新皮层中,第 5 层 parvalbuin 阳性的间神经元和皮质下突起的谷氨酸能神经元的比例低于预期。相反,细胞核对机械处理更有抵抗力,可以从冷冻组织中解离出来。 研究发现,单个细胞核已被证明可以提供足够的基因表达信息来定义成人大脑和小鼠海马区相对宽泛的细胞类别。 此外,新鲜解离的神经组织很难获得;相比之下,从意外去世或者因疾病去世后病人处所获得的正常和疾病组织,是研究大脑组织中细胞类型的主要样本类型。 但是,这些组织通常是冰冻的样本,因此 snRNA-seq 是解决细胞类型少以及冰冻样本的重要方法。

研究发现,从冷冻的 S1 皮层中分离单个核,进行神经核抗原(NeuN) 流动分选,并在 Fluidigm C1 系统上进行 RNA 测序,细胞核和细胞数据显示检测到的基因数量和类型相似(S1 细胞核 - 平均 5619 个基因;S1 细胞 - 平均 4797 个基因)。核数核据含有较高比例的内含子 reads。

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图。SnRNA-seq 揭示了兴奋性神经元的特性

Grubman 等人通过对从去世后的阿尔茨海默氏症患者和年龄匹配的非疾病患者身上提取的内嗅皮层组织进行 snRNA-seq,得到了 13,214 个细胞,每个细胞中位数检测到 646 个基因。UMAP 显示,共鉴定到了小胶质细胞、星形胶质细胞、神经元、少突胶质祖细胞(OPCs),少突胶质细胞和内皮细胞。

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图。人内嗅皮层 snRNA-seq 揭示阿尔茨海默病中细胞类型特异性标记基因和细胞类型特异性改变

同样是阿尔兹海默症疾病,Mathys 等人通过对冷冻的去世后病人脑组织进行 snRNA-seq,共鉴定到了人类大脑的主要细胞类型:兴奋性神经元(NRGN 标记),抑制性神经元(GAD1),星形胶质细胞(AQP4),少突胶质细胞(MBP),小胶质细胞(CSF1R 和 CD74)、少突胶质祖细胞(VCAN)、内皮细胞和周细胞(AMBP)。

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图。snRNA-seq 谱分析阿尔兹海默症病人脑组织中细胞类型


心脏组织样本的 snRNA-seq

在心脏的单细胞 RNA 测序研究中也存在着许多难点。 首先,成年的心脏组织较难消化,很难保证在不损伤细胞的情况下,得到高质量的细胞悬液;再者,由于心肌细胞大,且形状不规则,导致细胞捕获较难。因此,心脏的研究通常依赖胚胎和新生儿的小鼠心脏或关注成年小鼠心脏的非心肌细胞群来避免这些问题。2020 年发表的一篇关于哺乳动物心脏单细胞核 RNA 测序探索细胞成分和细胞特征的文章,则在一定程度上扫除了心脏单细胞 RNA 测序的障碍。snRNA-seq 分析得到了 8635 个细胞核和 22,568 个基因,每个细胞平均得到 2662.6 reads。UMAP 显示了 24 个不同的细胞类群,其中较多的是内皮细胞(28.8%)、成纤维细胞(25.3%) 和心肌细胞(22.8%),它们分别含有约 2500 个、2200 个和 2000 个细胞核。

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图。snRNA-seq 谱分析心脏组织中细胞类型

Cui 等人使用 snRNA-seq 揭示再生新生儿和非再生晚期心脏心肌细胞的不同群体。结果表明,一个明显的未成熟的心肌细胞群体进入细胞周期响应损伤。对这些心肌细胞的转录组分析揭示了支持新生儿再生反应的基因调控网络,该网络的缺失与再生阻断相一致。

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图。snRNA-seq  确定新生儿心脏中不同的心肌细胞群

肾脏组织样本的 snRNA-seq

2019 年,来自华盛顿大学医学院的 Benjamin D. Humphreys 团队比较分析了 肾脏组织的单细胞 RNA 测序(scRNA-seq) 和肾脏组织的单细胞核 RNA 测序(snRNA-seq) 在肾脏细胞类群鉴定中的区别。 与 scRNA-seq 相比,snRNA-seq 捕获了多种在 scRNA-seq 数据集中不存在的肾脏细胞类型,包括肾小球足细胞、系膜细胞和内皮细胞。同时也未检测到应激反应基因。与已发表的 scRNA-seq 数据集(分别为 2.4% 和 0.12%) 相比,snRNA-seq 方法产生了 20 倍以上的足细胞。

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图。加上内含子 reads,snRNA 测序的表现相当于或优于 scRNA 测序

Wilson 等人通过对冷冻保存的糖尿病人肾脏样本进行 snRNA-seq,共得到 23,980 单细胞核数据,其中包括 11 种肾脏细胞类型和 4 种免疫细胞类型(近曲小管;CFH,补体因子 H 阳性细胞;亨利循环细胞;远曲小管细胞;连接小管细胞;集尿管细胞;主细胞;插入细胞;阿足突细胞;内皮细胞;系膜细胞;白细胞)。

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图。snRNA 测序鉴定肾脏细胞及免疫细胞种类

结   语

总结而言,单细胞核测序技术在样本适用性上较单细胞 RNA 测序技术更有优势,它不局限于新鲜的组织样本,适用于冰冻样本。此外,单细胞核的制备相对于单细胞悬液的制备要更简单,可以尽量减少酶解,机械压力诱导的假的细胞类群的产生。在数据分析方面,单细胞核 RNA 测序可以获得内含子区、基因间区的数据,使细胞类型的鉴定分辨率更高,获得的基因信息相对更加丰富。

但是单细胞核测序可以取代单细胞 RNA 测序么? 答案一定是 NO!  在选择两种方法时,要更多的结合自身的条件来确定。自己有什么样本?是否可以制备合格的细胞悬液?是否有对酶敏感的细胞类型?各项因素都需要综合考虑。未来,单细胞核 RNA 测序与单细胞 RNA 测序的结合可能是全面获得样本中细胞类型的策略。也让我们期待广大的科研工作者来解密。

伯豪生物单细胞多组学研究一站式服务优势

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样本制备

单细胞测序样本保存液、单细胞核分离试剂盒以及单细胞悬液制备方法完美解决单细胞样本制备问题。

数据分析

建立了完善的单细胞测序(核)数据处理方法及个性化分析方法和流程。


参考文献

1. Wilson P C, Wu H, Kirita Y, et al. The single-cell transcriptomic landscape of early human diabetic nephropathy[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2019, 116(39): 19619-19625.

2. Lake B B, Ai R, Kaeser G E, et al. Neuronal subtypes and diversity revealed by single-nucleus RNA sequencing of the human brain[J]. Science, 2016, 352(6293): 1586-1590.

3. Bakken T E, Hodge R D, Miller J A, et al. Single-nucleus and single-cell transcriptomes compared in matched cortical cell types[J]. PLOS ONE, 2018, 13(12).

4. Selewa A, Dohn R, Eckart H, et al. Systematic Comparison of High-throughput Single-Cell and Single-Nucleus Transcriptomes during Cardiomyocyte Differentiation.[J]. Scientific Reports, 2020, 10(1).

5. Lake B B, Codeluppi S, Yung Y C, et al. A comparative strategy for single-nucleus and single-cell transcriptomes confirms accuracy in predicted cell-type expression from nuclear RNA[J]. Scientific Reports, 2017, 7(1): 6031-6031.

6. Barthelson R, Lambert G M, Vanier C H, et al. Comparison of the contributions of the nuclear and cytoplasmic compartments to global gene expression in human cells[J]. BMC Genomics, 2007, 8(1): 340-340.

7. Zhang Y, Gagolopez N, Li N, et al. Single-cell imaging and transcriptomic analyses of endogenous cardiomyocyte dedifferentiation and cycling.[J]. Cell discovery, 2019, 5(1).

8. MiaoCui,ZhaoningWang,KenianChen,AkanshaM.et al. Dynamic Transcriptional Responses to Injury of Regenerative and Non-regenerative Cardiomyocytes Revealed by Single-Nucleus RNA Sequencing[J]. Dev Cell . 2020 Apr 6;53(1):102-116.e8.  

9. Grubman A, Chew G, Ouyang J F, et al. A single-cell atlas of entorhinal cortex from individuals with Alzheimer’s disease reveals cell-type-specific gene expression regulation[J]. Nature Neuroscience, 2019, 22(12): 2087-2097.

10. Wolfien M, Galow A, Muller P, et al. Single-Nucleus Sequencing of an Entire Mammalian Heart: Cell Type Composition and Velocity[J]. Cells, 2020, 9(2).

11. Mathys H, Davilavelderrain J, Peng Z, et al. Single-cell transcriptomic analysis of Alzheimer’s disease[J]. Nature, 2019, 570(7761): 332-337.

12. Wu H, Kirita Y, Donnelly E L, et al. Advantages of Single-Nucleus over Single-Cell RNA Sequencing of Adult Kidney: Rare Cell Types and Novel Cell States Revealed in Fibrosis[J]. Journal of The American Society of Nephrology, 2019, 30(1): 23-32.


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